探討益生素檢測方法

　　近年來，隨著對環(huán)保要求的提高，對抗生素使用的限制，以微生態(tài)為主的新一代產品發(fā)展迅猛，并正在形成產業(yè)。

　　但目前市場上很多益生素產品質量仍不穩(wěn)定，生產處于復配、仿制階段，檢測手段不夠完善，產品的標準和檢測方法尚混亂，優(yōu)秀的檢測人員不足，造成市場上益生素產品良莠難辯。因此，我們在此對益生菌的檢測方法作一簡單探討，以期能更好的完善益生素的市場。

　　通過測定一定體積培養(yǎng)液中所含菌絲的量來反映微生物的生長狀況。方法是，取一定量的待測培養(yǎng)液（如10mL）放在有刻度的離心管中，設定一定的離心時間（如5min）和轉速（如5000 rpm），離心后，倒出上清夜，測出上清夜體積為v，則菌絲濃度為（10-v）/10。菌絲濃度測定法是大規(guī)模工業(yè)發(fā)酵生產上微生物生長的一個重要監(jiān)測指標。這種方法比較粗放、簡便、快速，但需要設定一致的處理條件，否則偏差很大，由于離心沉淀物中夾雜有一些固體營養(yǎng)物，結果會有一定偏差。

　　可用離心或過濾法測定。一般干重為濕重的10-20%。在離心法中，將一定體積待測培養(yǎng)液倒入離心管中，設定一定的離心時間和轉速，進行離心，并用清水離心洗滌1-5次，進行干燥。干燥可用烘箱在105℃或100℃下烘干，或采用紅外線烘干。如用過濾法，絲狀真菌可用濾紙過濾，細菌可用醋酸纖維膜等濾膜過濾，過濾后用少量水洗滌，在 400℃下進行真空干燥。稱干重法較為煩瑣，通常獲取的微生物產品為菌體時，常采用這種方法，如活性干酵母（activity dry yeast，ADY）。

　　微生物的生長引起培養(yǎng)物混濁度的增高。通過紫外分光光度計測定一定波長下的吸光值，判斷微生物的生長狀況。對某一培養(yǎng)物內的菌體生長作定時跟蹤時，可采用一種特制的有側臂的三角燒瓶。將側臂插入光電比色計的比色座孔中，即可隨時測定其生長情況，而不必取菌液。該法主要用于發(fā)酵工業(yè)菌體生長監(jiān)測。如我所使用UNICO公司的紫外-可見分光光度計，在波長600nm處用比色管定時測定發(fā)酵液的吸光光度值OD600。

　　1.4 血球計數板法

　　血球計數板是一種有特別結構刻度和厚度的厚玻璃片，玻片上有四條溝和兩條嵴，中央有一短橫溝和兩個平臺，兩嵴的表比兩平臺的表面高0.1mm，每個平臺上刻有不同規(guī)格的格網，中央0.1 mm2面積上刻有400個小方格。通過油鏡觀察，統(tǒng)計一定大格內微生物的數量，即可算出1mL菌液中所含的菌體數。這種方法簡便、直觀、快捷，但只適宜于單細胞狀態(tài)的微生物或絲狀微生物所產生的孢子進行計數，并且所得結果是包括死細胞在內的總菌數。血球計數板構造，如圖1。計數室構造，如圖2。

　　為了彌補一些微生物在油鏡下不易觀察計數，而直接用血球計數板法又無法區(qū)分死細胞和活細胞的不足，人們發(fā)明了染色計數法。借助不同的染料對菌體進行適當的染色，可以更方便的在顯微鏡下進行活菌計數。如酵母活細胞計數可用美藍染色液，染色后在顯微鏡下觀察，活細胞為無色，而死細胞為藍色。

　　將已知顆粒（如霉菌孢子或紅細胞）濃度的液體與一待測細胞濃度的菌液按一定比例均勻混合，在顯微鏡視野中數出各自的數目，即可得未知菌液的細胞濃度。這種計數方法比較粗放，并且需要配制已知顆粒濃度的懸液做標準。

　　對未知菌樣做連續(xù)十倍系列稀釋，根據估計數，從最適宜的三個連續(xù)的10倍稀釋液中各取5mL試樣，接種1mL到3組共15支裝培養(yǎng)液的試管中，經培養(yǎng)后記錄每個稀釋度出現生長的試管數，然后查最大或然數表MPN（most probably number）得出菌樣的含菌數，根據樣品稀釋倍數計算出活菌含量。該法常用于食品中微生物的檢測，例如飲用水和牛奶的微生物限量檢查。

　　1.8 平板菌落計數法

　　這是一種最常用的活菌計數法。將待測菌液進行梯度稀釋，取一定體積的稀釋菌液與合適的固體培養(yǎng)基在凝固前均勻混合，或將菌液涂布于已凝固的固體培養(yǎng)基平板上。保溫培養(yǎng)后，用平板上出現的菌落數乘以菌液稀釋度，即可算出原菌液的含菌數。一般以直徑9cm的平板上出現50-500個菌落為宜。但方法比較麻煩，操作者需有熟練的技術。平板菌落計數法不僅可以得出菌液中活菌的含菌數，而且同時將菌液中的細菌進行了一次分離培養(yǎng)，獲得了單克隆。

　　在平板計數法的基礎上，發(fā)展了小型商品化產品以供快速計數用，形式有小型厚濾紙片、瓊脂片等。在濾紙和瓊脂片中吸有合適的培養(yǎng)基，其中加入活性指示劑2，3，5-氯化三苯基四氮唑（TTC，無色），待蘸取測試菌液后，置密封包裝袋中培養(yǎng)。短期培養(yǎng)后，在濾紙上出現一定密度的玫瑰色微小菌落，與標準紙色板上圖譜比較，即可估算出樣品的含菌量。試劑紙法計數快捷準確，相比而言避免了平板計數法的人為操作誤差。

　　用特殊的濾膜過濾一定體積的含菌樣品，經丫-叮橙染色，在紫外顯微鏡下觀察細胞的熒光，活細胞會發(fā)橙色熒光，而死細胞則發(fā)綠色熒光。

　　1.11 測定含氮量

　　大多數細菌的含氮量為干重的12.5%，酵母為7.5%，霉菌為6.0%。根據含氮量剩以6.25，即可測定粗蛋白的含量。含氮量的測定方法有很多，如用硫酸、過氯酸、碘酸、磷酸等消化法和Dumas測N2氣法。Dumas測N2氣法是將樣品與CuO混合，在CO2氣流中加熱后產生N2，收集在呼吸計中，用KOH吸去CO2后，即可測出N2的量。

　　1.12 測定含碳量

　　將少量（干重0.2-2.0mg）生物材料混入1mL水或無機緩沖液中，用2mL 2%的K2Cr2O7溶液在100℃下加熱30min后冷卻。加水稀釋至5mL，在580nm的波長下讀取吸光光度值，即可推算出生長量。需用試劑做空白對照，用標準樣品做標準曲線。

　　1.13 還原糖測定法

　　還原糖通常是指單糖或寡糖，可以被微生物直接利用，通過還原糖的測定可間接反映微生物的生長狀況，常用于大規(guī)模工業(yè)發(fā)酵生產上微生物生長的常規(guī)監(jiān)測。方法是，離心發(fā)酵液，取上清液，加入斐林試劑，沸水浴煮沸3min，取出加少許鹽酸酸化，加入Na2S2O3臨近終點時加入淀粉溶液，繼續(xù)加Na2S2O3至終點，查表讀出還原糖的含量。

　　微生物的檢測，其發(fā)展方向是快速、準確、簡便、自動化，當前很多生物制品公司利用傳統(tǒng)微生物檢測原理，結合不同的檢測方法，設計了形式各異的微生物檢測儀器設備，正逐步廣泛應用于醫(yī)學微生物檢測和科學研究領域。例如：

　　1、抗干擾培養(yǎng)基和微生物數量快速檢測技術相結合 解決了傳統(tǒng)微生物檢測手段不能解決的難題，為建立一套完整的抗干擾微生物檢測系統(tǒng)奠定了堅實的基礎。中科院廣州分院合作產業(yè)處提供的抗干擾微生物培養(yǎng)基、新型生化鑒定管、微生物計數卡、環(huán)境質量檢測試劑盒等，可方便的用于多項檢測。

　　2、BACTOMETER 全自動各類總菌數及快速細菌檢測系統(tǒng) 可以數小時內獲得監(jiān)測結果，樣本顏色及光學特征都不影響讀數，對酵母和霉菌檢測同樣高度敏感原理是利用電阻抗法 （IMPEDANCE TECHNOLOGY）將待測樣本與培養(yǎng)基置于反應試劑盒內，底部有一對不銹鋼電極，測定因微生物生長而產生阻抗改變。如微生物生長時，可將培養(yǎng)基中的大分子營養(yǎng)物經代謝轉變?yōu)榛钴S小分子，電阻抗法可測試這種微弱變化，從而比傳統(tǒng)平板法更快速監(jiān)測微生物的存在及數量。測定項目包括總生菌數，酵母菌，大腸桿菌群，霉菌，乳酸菌，嗜熱菌，革蘭氏陰性菌，金黃色葡萄球菌等。

　　益生菌不僅有很多種類（如芽孢桿菌、乳酸菌、酵母菌），其檢測方法也是非常之多。對不同的益生素，需要選擇適當的方法來檢測、計數。

　　目前常用的檢測是顯微鏡直接計數法和平板計數法兩種，顯微鏡直接計數法的最大優(yōu)點就是快速，而且此方法可以通用，即不同的益生菌種類都可以用同一方法檢測其數量；但其也有諸多缺點，如不能區(qū)分死菌和活菌，也不能區(qū)分形狀類似的不同益生菌，故其只能作為一種粗略、簡單的方法。而平板計數法卻可以克服顯微鏡計數法的缺點，但其對操作人員素質及操作能力要求都比較高，需要比較專業(yè)人員來操作。

　　針對目前選擇以平板計數來進行測量益生菌的含量為主，本文也就此方法作一簡單探討。

　　2.1.2 采用玻片直接涂布法，即在潔凈的玻片上劃1cm2正方形，然后吸取經5～10倍稀釋的檢樣0.01mL涂布在方框內，干燥固定后，先用甲醇處理5min再進行革蘭氏染色、鏡檢，判斷大概菌數和菌種，則可預測分離培養(yǎng)應選擇的培養(yǎng)基和稀釋倍數，如不能判斷，即認為每克樣品含菌數小于105。

　　根據涂布的預測與產品說明，選擇相應的培養(yǎng)基，見表1

　　2.3 檢測的操作

　　準確稱取益生素樣品10g，放入裝有90mL無菌水的玻璃瓶中，用手或振蕩機振蕩20min，靜置約20min，即成10-1稀釋液；再用10mL無菌吸管，吸取10-1菌液10mL移入裝有90mL無菌水的玻璃瓶中，充分震蕩，即成10-2稀釋液；以此類推，每次更換吸管連續(xù)稀釋，直到制成適當稀釋度的菌懸液。

　　2.3.2 平板接種：

　　用1mL無菌吸管吸取適當稀釋度的菌懸液1mL到一個滅菌平皿中，接種好三個平皿，再在培養(yǎng)皿中分別倒入已融化并冷卻至45-50℃左右的培養(yǎng)基，蓋好蓋子，趁熱輕輕轉動培養(yǎng)皿，使菌液與培養(yǎng)基混合均勻，冷凝后倒置37℃下培養(yǎng)48～72h后長出菌落后即可計數。

　　2.4 結果計算及說明：

　　將三個平皿的平均菌落數乘以稀釋倍數，即為每g益生素中所含的活菌數（如在10-8有30個菌落，即可計為3.0×109cfu/g或者cfu/mL）。選取菌落數在30-300之間的平皿作為菌落總數測定的標準。

　　3 討論

　　益生菌菌種的質量是微生態(tài)調節(jié)劑生產的關鍵和質量保證，因此在生產前必須作如下鑒定：

　　(1)菌株染色形態(tài)與菌落均應具典型特征；

　　(2)生化反應與糖發(fā)酵均應符合伯杰氏細菌分類的特征；

　　(3)對于乳酸菌類須測定其代謝產物中的有機酸；

　　(4)血清學檢查、凝聚試驗，效價不低于原效價的1/2；

　　(5)毒性試驗:濃菌液給小白鼠腹腔注射或灌胃試驗，小白鼠應無不良反應出現；

　　(6)必要時作遺傳學特征的鑒定。

　　此外，我國對微生態(tài)調節(jié)劑的發(fā)展起步較晚，目前尚無統(tǒng)一檢測方法，故需不斷積累有關資料，通過研究完善和建立切實可行的方法是保證微生態(tài)調節(jié)劑的生產與質量的必要手段。（作者：肖永友 來源：博仕奧生化研發(fā)中心）