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測(cè)真蛋白時(shí)需要主意的因素有哪幾個(gè)

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樓主
發(fā)表于 2007-7-6 06:33:58 | 只看該作者 回帖獎(jiǎng)勵(lì) |倒序?yàn)g覽 |閱讀模式
還有一個(gè)問(wèn)題,測(cè)真蛋白時(shí)需要主意的因素有哪幾個(gè)?
過(guò)濾說(shuō)是用傾斜法過(guò)濾,傾斜法怎么操作?
加入硫酸銅和氫氧化鈉攪拌后應(yīng)該是什么顏色?
配出的硫酸銅三四天后有白色絮狀沉淀,正常么?
過(guò)濾時(shí)有的過(guò)濾特別慢,濾紙正常,還有什么原因,七八個(gè)小時(shí)過(guò)濾不完,是粉碎得太細(xì)了么?都有什么可能?
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沙發(fā)
發(fā)表于 2007-7-30 15:52:37 | 只看該作者
怎么沒(méi)人回答呢?期待.....
板凳
發(fā)表于 2007-7-30 23:40:28 | 只看該作者
應(yīng)是氫氧化銅的色。我現(xiàn)在使用的抽濾的辦法否則太慢
地毯
發(fā)表于 2007-7-31 07:18:28 | 只看該作者
我現(xiàn)在用的是普通濾紙漏斗過(guò)濾,如果時(shí)間太慢,將漏斗稍微提升一點(diǎn);你的硫酸銅可能有問(wèn)題,是不是配制是沒(méi)有加熱充分溶解還是蒸餾水有問(wèn)題?如果不好,建議重新配制~!
5
發(fā)表于 2007-7-31 07:30:32 | 只看該作者
樣品+CUSO4+NAOH的顏色是灰藍(lán)色,沉淀是CU+蛋白形成的
6
發(fā)表于 2007-7-31 10:50:24 | 只看該作者
真蛋白測(cè)定—硫酸銅沉淀法
1、原理:
    蛋白質(zhì)能變成不溶于水的狀態(tài),而與其它含氮化合物分離開(kāi)來(lái)。當(dāng)加入沉淀劑(如硫酸銅),然后經(jīng)過(guò)過(guò)濾,用水洗去沉淀中的鹽類及溶解性的含氮物,按照測(cè)粗蛋白的方法,即得樣品中的真蛋白含量。
2、操作步驟:
1)準(zhǔn)確稱取樣品2克左右分別放于2只300ml燒杯中用50ml蒸餾水?dāng)?shù)次沖洗,邊沖邊攪拌,然后將溶液加熱至沸。
2)向燒杯內(nèi)倒入25ml 6%硫酸銅溶液略攪拌,再徐徐加入25ml 1.25% NaOH溶液攪動(dòng)(不要加得太快)。
3)用表面皿將燒杯蓋上靜置2小時(shí),然后用兩層定量濾紙慢速過(guò)濾,用熱蒸餾水沖洗燒杯數(shù)次,再用熱蒸餾水沖洗沉淀物,濾液用氯化鋇溶液檢查不混濁后,  將漏斗連同濾紙置50—80℃烘至略潮(約1.5小時(shí))。
4)消化:同測(cè)粗蛋白,但易溢出,操作者要守在旁邊觀察,消化液不能加多也不能少。
3、計(jì)算:(同粗蛋白)
附試劑配制:    1)6%硫酸銅:稱取6g硫酸銅溶于100ml水中。
                2)1%氯化鋇:稱1g氯化鋇溶于100ml水中。

最近接手化驗(yàn)室工作,我就按照上述過(guò)程操作,  過(guò)濾倒不是很慢,但就是消煮后發(fā)現(xiàn)全部結(jié)晶了,可能是自己用硫酸太少或催化劑加多了,  第一次做是以失敗告終, 檢測(cè)結(jié)果為0,凱氏瓶還燒爆一個(gè):P
7
發(fā)表于 2007-7-31 16:40:13 | 只看該作者
應(yīng)該是用硫酸太少,至少要用20ML以上
8
發(fā)表于 2007-8-1 15:11:09 | 只看該作者

我們真蛋白測(cè)定方法——與你們的略有不同

1、原理
      硫酸銅在堿性溶液中,可將蛋白質(zhì)沉淀,且不溶于熱水過(guò)濾和洗滌后,可將純蛋白質(zhì)和非蛋白質(zhì)含蛋物分離,再用凱氏定蛋法測(cè)定沉淀中的蛋白質(zhì)含量。
2、儀器設(shè)備
      (1)燒杯:200ml。
      (2)定性濾紙。
      (3)其他設(shè)備與粗蛋白質(zhì)測(cè)定法的相同。
3、試劑及配制
      (1)100g/L硫酸銅溶液:分析純硫酸銅(CuSO4·5H2O)10g溶于100mL蒸餾水中。
      (2)25g/L氫氧化鈉溶液:將2.5g分析純氫氧化鈉溶于100mL蒸餾水中。
            (3)10g/L氯化鋇溶液:1g氯化鋇(BaCl·H2O)溶于100mL蒸餾水中。
            (4)2moL/鹽酸溶液。
            (5)其他試劑預(yù)一般粗蛋白測(cè)定法的相同。
4、測(cè)定步驟
               準(zhǔn)確稱取試樣1g左右(精確到0.0001g),置于200mL燒杯中,加50mL蒸餾水,加熱至沸,加入20mL硫酸銅溶液,20mL氫氧化鈉溶液(加入以上兩種溶液多要緩慢,且要邊加入邊攪拌),用玻璃棒充分?jǐn)嚢瑁胖?h以上,用傾斜過(guò)濾(用定型濾紙),然活后用60~80℃熱蒸餾水洗滌沉淀5~6次,用氯化鋇溶液5滴和鹽酸溶液1滴檢查濾液,直至不生成白色沉淀為止。將沉淀和濾紙放在65℃烘箱干燥2h,然后全部轉(zhuǎn)移到凱氏燒瓶中,消化后進(jìn)行定蛋測(cè)定。
5、結(jié)果計(jì)算
       同粗蛋白測(cè)定。
9
發(fā)表于 2007-8-1 20:26:40 | 只看該作者
我們所用的硫酸銅和氫氧化鈉的濃度不一樣. 濃度高了過(guò)濾很慢,所以將濃度都降了一半.
10
發(fā)表于 2007-8-2 10:55:56 | 只看該作者
本帖最后由 tony2005428 于 2009-5-14 11:20 編輯

#9
濃度不影響過(guò)濾吧

#1
1、傾斜法過(guò)濾:是否就是加濾紙的V型漏斗過(guò)濾呢??具體的我也不是很清楚,我們就是這樣操作的。
2、加入硫酸銅和氫氧化鈉攪拌后應(yīng)該是什么顏色?
原料不同顏色有所差異,不過(guò)顏色好像不影響真蛋白的測(cè)定。
3、過(guò)濾時(shí)有的過(guò)濾特別慢?
你是否加入硫酸銅和氫氧化鈉后直接過(guò)濾呢??要用玻璃棒充分?jǐn)嚢?,放?h以上,后再過(guò)濾,此時(shí)濾液不混濁,有上清液;若直接過(guò)濾時(shí)溶液混濁,成糊狀,非常慢。
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